FL6000Măsător de fluorescență clorofilă cu modulare dublă

FL6000Fluorescentul de clorofil dual modulat este cea mai recentă versiune actualizată a fluorescentului de clorofil dual modulat FL3500, un instrument de cercetare puternic destinat cercetării aprofundate a mecanismelor de fotosinteză a microalgelor, clorofilelor sau suspensiilor de ciste, cum ar fi algele albastre sau verde. Instrumentul are control de măsurare cu două canale, poate controla temperatura eșantionului de măsurare și este echipat cu lumină cu o singură întoarcere (STF), cu mai multe proceduri de măsurare încorporate care pot fi modificate de către utilizator, care pot efectua diverse cercetări aprofundate internaționale despre fluorescența clorofilii. Structura sa de bază este un cap de măsurare optic care conține o ceașcă de eșantionare standard pentru suspensie, 3 seturi de surse de lumină LED-uri încorporate și un detector de semnal de diodă PIN cu conversie AD de 1MHz/16 biți. Câștigurile și timpul de creditare pentru conversia AD pot fi controlate prin software. Detectorul poate măsura semnalele fluorescente cu o rezoluție de timp de până la 4 µs (versiunea rapidă este de 1 µs).

Domeniul de aplicare:

·Proprietăți de fotosinteză a plantelor și screening tulburări metabolice

·Detectarea forței biologice și non-biologice

·Studii privind rezistența sau sensibilitatea plantelor la coerciție

·Cercetarea haosului metabolic

·Cercetarea mecanismului de lucru al sistemului fotosintetic

·Studii strategice de răspuns la fotofiziologia plantelor forțate

Eșantioane tipice:

·Alge albastre (bacterii albastre)

·Algă verde

·Suspensii de clorofil

·Suspensione de ciste

·Deşeuri de plante

Caracteristici:

·Măsurarea inducată de fluorescență cu clorofilă, măsurarea PAM (modulare de puls), măsurarea dinamicii rapide a fluorescenței OJIP, QA - dinamică de re-oxidare, conversia stării S, estingerea fluorescenței cu clorofilă și alte programe de măsurare sunt recunoscute ca fiind cele mai complete fluorescențe cu clorofilă din lume.

·Tehnologia de modulare dublă, care poate măsura lumina cu modulare dublă, cu lumină fotochimică modulată și lumină fotochimică continuă, poate efectua măsurări STF (single-cycle flash), TTF (double-cycle flash) și MTF (multi-cycle flash) și tehnologie FRR personalizată (Fast Repetition Rate)

·Rezoluţie de timp standard de până la 4 µs, versiune rapidăPână la 1 µs, cel mai înalt fluorescent clorofil cu rezoluție temporală actuală

·Unitatea de control este dublu canal, poate conecta senzorul de temperatură pentru controlul temperaturii, conecta unitatea de măsurare a oxigenului pentru măsurarea reacției Hill și altele.

·Sensibilitate extrem de ridicată, limită minimă de detectare de 100ng Chla/L

·Măsurarea luminii, lumina luminoasă, culoarea sursei de lumină monoreflexă saturată și intensitatea pot fi personalizate

·Gazdă cu ecran tactil colorat pentru vizualizarea în timp real a curvelor fluorescente

Parametrii tehnici:

·Procedura experimentală: măsurarea efectului de inducere a fluorescenței prin clorofilă Kautsky; PAM (modulare de impuls)Dinamica de stingere fluorescentămăsurarea; Măsurarea rapidă a dinamicii fluorescenței OJIP; QA – dinamică oxidativă; conversie de stare S; Inducerea rapidă a fluorescenței prin clorofil

• Parametrii fluorescenței:

uPAMMăsurarea dinamicii de stingere cu fluorescență: Măsurarea curbei dinamice de stingere cu fluorescență, calculabil F₀Fm, Fv, F.₀„,Fm’,Fv’,QY(II),NPQ,ΦPSII,Fv/Fm,Fv’/Fm’,Rfd,qN,qP,ETRMai mult de 50 de parametri de fluorescență a clorofilii;

uOJIPMăsurarea rapidă a dinamicii fluorescenței: Măsurarea curbei rapidă a dinamicii fluorescenței OJIP, calculabilă F₀FJ, Fi, Fm, Fv, VJ, Vi, Fm / F₀Fv și F₀Fv / Fm, M0, Zonă, Zonă fixă, SM, SS, N, Phi_P₀și psi_₀și Phi_E₀și Phi_D₀Fii_Pav, ABS/RC și TR₀/ RCși ET₀/ RCși DI₀/ RCmai mult de 20 de parametri;

uQAKinetica QA-reoxidare: Măsurarea curbei QA-reoxidare pentru adaptarea amplitudinilor (A1, A2, A3) și constantelor de timp (T1, T2, T3) ale fazei rapide, medie și lente ale procesului QA-reoxidare.

uS-ulTestul de stare S: Măsurarea curbei de degradare a fluorescenței în testul de stare S pentru calcularea sistemului de lumină inactivă II (PSII)_XNumărul de centre de reacţie

uFlash Fluorescence Induction (FFL, doar versiunea rapidă): pentru calcularea suprafeței antenei eficiente, a conectivității antenei și altele

uOferă funcții de protocol personalizate pentru heterogenitatea antenei PSIIαCu PSIIβAnaliza, suprafața de secțiune a antenei eficiente PSII (SPSIIMăsurarea parametrilor (opțional)

uQACurba dinamicii oxidației șiTestul în starea SCurba de declinare fluorescentă (lui Li，2010）

·Rezoluție temporală (frecvență de eșantionare): detector de înaltă sensibilitate, versiunea standard cu rezoluție temporală de 4 µs și versiunea rapidă cu 1 µs

·Limita minimă de testare: versiunea standard 100ng Chla / L, versiunea rapidă 1μg Chla / L

·Unitatea de control: cu ecran tactil color pentru vizualizarea în timp real a diagramelor fluorescente

·Cameră de măsurare:

oMăsurarea fulgerului: 623nm roșu portocaliu și 460nm albastru, timp de fulger 2-5µs

sauLumină saturată cu o singură rotație: intensitate luminoasă maximă de 170000 μmol (fotoni) / m².s, timp de lumină 20-50 μs

sauLumină fotochimică continuă: intensitate luminoasă maximă de 3500 µmol (fotoni) / m².s

sauDetector fluorescent: diodă fotovoltaică PIN

sauADConvertător: 16bit

oeșantion tub de testare: suprafața de fund 10 x 10mm, volumul 4ml

• Camera de măsurare personalizată (opțională): se poate personaliza culoarea luminii, a fulgerului saturat și a luminii fotochimice (albastru, albastru, chihlimbar etc.) și banda de detectare (ChlA, ChlB)

• Sursă de lumină infraroşie îndepărtată (opţională): pentru măsurarea F₀Lungimea de undă 730 nm

·Modul de măsurare a oxigenului (opțional): măsurarea eliberării de oxigen din alge

·Controlul temperaturii (opțional): TR 6000, interval de temperatură 5-60 °C, precizie 0,1 °C

• Amestecare electromagnetică (opțională): pentru amestecarea eșantioanelor pentru a preveni precipitarea eșantioanelor, poate fi reglată manual sau controlată automat de software

• Interfață: RS232 Serial / USB

FluorWin înSoftware: definirea sau crearea de scheme experimentale, setări de control al sursei de lumină, ieșire de date, procesare analitică și afișare grafică

Aplicații tipice:

1. Cercetătorii Wang Qiang, de la Institutul de Biologie Acvatică al Academiei Chineze de Științe, au folosit fluorescența clorofilică FL3500 (modelul anterior FL6000) și sistemul de eliberare termică a plantelor TL pentru a demonstra că forțarea nitraților afectează în primul rând partea receptorului PSII a Synechocystis sp. PCC 6803 (Zhan X, et al, 2017). Studiul în profunzime al mecanismului acestei fotosinteze necesită adesea combinarea celor două instrumente.

2.Cercetătorul Pan Rong Liang de la Institutul de Ecologie și Geografie din Xinjiang al Academiei Chineze de Științe și grupul său au folosit fluorescentul de clorofil FL3500 (modelul anterior FL6000) pentru a efectua în profunzime cercetări toxice asupra metalelor grele, sărilor, compușilor toxici, erbicidelor, pesticidelor și antibioticelor din mediul înconjurător. Măsurarea rapidă a fluorescenței OJIP de înaltă rezoluție a FL3500, prin intermediul procedurilor de măsurare a fluorescenței clorofilice, cum ar fi QA-Reoxidation Dynamics și S-State Conversion, dezvăluie mecanismele toxice și impactul lor ecologic asupra sistemelor de fotosinteză a algelor la diferite concentrații și timp de prelucrare. În prezent, grupul Pan a publicat peste douăzeci de articole de înalt nivel în jurnalele internaționale SCI și în jurnalele naționale de bază, utilizând FL3500 (modelul anterior FL6000).

Origine: Cehia

Referențe:

1. Manaa A, et al. 2019. Toleranţa la salinitate a quinoa (Chenopodium quinoaWilld), astfel cum sunt evaluate prin ultrastructura cloroplastului și performanța fotosintetică. Botanica de mediu şi experimentală 162: 103-114

2. Yu Z, et al. 2019. Sensibilitatea Chlamydomonas reinhardtii la stresul de cadmiu este asociată cu fototaxia. Știința mediului: procese și impacte 21: 1011-1020

3. Liang Y, et al. 2019. Mecanismele moleculare de aclimatare și adaptare la temperatură în diatomele marine. Jurnalul ISME, DOI: 10.1038/s41396-019-0441-9

4. Orfanidis S, et al. 2019. Rezolvarea eutrofizării cianobacteriilor prin biotehnologie. Științe Aplicate 9(12): 2566

5. Sicora C I, et al. 2019. Reglementarea funcției PSII înCianotezăsp. ATCC 51142 în timpul unui ciclu lumină-întuneric. Cercetarea fotosintezei 139(1-3): 461-473

6. Smythers A L, et al. 2019. Caracterizarea efectului Poast asupraChlorella vulgaris (în engleză)un organism care nu este ţintă. Chimosfera 219: 704-712

7. Albanese P, et al. 2018. Modularea proteomului tilakoid în plantele de mazăre cultivate la iradiații diferite: profilarea proteomică cantitativă într-un nonmodel de organism ajutat de integrarea datelor transcriptomice. Jurnalul Plantelor 96(4): 786-800

8. Antal T, Konyukhov I, Volgusheva A, et al. 2018. Sistem de inducție și relaxare a fluorescenței clorofile pentru monitorizarea continuă a capacității fotosintetice în fotobioreactorele. Fiziol Plantarum. DOI: 10.1111/ppl.12693

9. Antal T K, Maslakov A, Yakovleva O V, et al. 2018.Simularea kineticii creșterii și descompunerii fluorescenței clorofile și a schimbărilor de absorbență legate de P700 prin utilizarea unei metode Monte-Carlo bazate pe reguli. Cercetarea fotosintezei. DOI: 10.1007 / s11120-018-0564-2

10.Biswas S, Eaton-Rye J J, et al. 2018. PsbY este necesar pentru prevenirea fotodeteriorării fotosistemului II într-un mutant deSinehocistăsp. PCC 6803. Fotosinteza, 56(1), 200–209.

11.Bonisteel E M, et al. 2018. Diferențele specifice tulpinii în ratele de reparare a fotosistemului II la picocianobacterii corelează cu diferențele în nivelurile proteinei FtsH și modelele de expresie a izoformelor. PLoS ONE 13(12): e0209115.

12.Fang X, et al. 2018. Răspunsuri transcriptomice ale cianobacteriei marineProchlorococculuipentru produsele de liză virală. Microbiologie de mediu, doi: 10.1101/394122.

13.Kuthanová Trsková E, Belgio E, Yeates A M, et al. 2018. Sensibilitatea protonilor antenei determină strategia de recoltare a luminii fotosintetice, Journal of Experimental Botany 69(18): 4483-4493